Los filtros de jeringa se eligen por tres datos: disolvente de la muestra, tamaño de poro y análisis posterior. CA, PES y PVDF sirven para muestras acuosas; nylon y PTFE, para disolventes orgánicos. Con 0,22 µm se esteriliza y con 0,45 µm se retienen partículas.
Elegir mal la membrana estropea la muestra antes de que llegue al equipo. Una membrana incompatible se deforma, retiene parte del analito o libera compuestos que aparecen como picos falsos. Aquí explicamos cómo decidir sin probar a ciegas.
Qué mirar antes de elegir un filtro de jeringa
Un filtro de jeringa es un disco de membrana dentro de una carcasa con conexión luer. Se acopla a la jeringa y retiene partículas o microorganismos al empujar el émbolo. Se usa antes de HPLC, espectrofotometría, cultivo celular o cualquier análisis en el que una partícula dé problemas.
Nosotros miramos siempre tres cosas, en este orden:
Compatibilidad química de la membrana y de la carcasa con tu disolvente.
Tamaño de poro, según busques limpiar la muestra o esterilizarla.
Diámetro del filtro, según el volumen que vayas a filtrar.
Membranas CA, nylon, PTFE, PES y PVDF: diferencias reales
La compatibilidad química es el criterio que más errores evita. La tabla resume cuándo encaja cada membrana y cuándo conviene descartarla.
Membrana
Carácter
Mejor uso
Evítala con
CA (acetato de celulosa)
Hidrófila, baja unión a proteínas
Soluciones acuosas y filtración estéril de medios biológicos
Acetona, DMSO, ácidos y bases fuertes
Nylon
Hidrófila
Muestras acuosas y orgánicas para HPLC
Ácidos fuertes; puede retener proteínas y algunos analitos
PTFE
Hidrófoba, muy resistente
Ácidos, bases y disolventes agresivos
Muestras acuosas sin humectar antes con alcohol
PES (polietersulfona)
Hidrófila, caudal alto, baja unión a proteínas
Tampones, medios de cultivo y filtración estéril
Disolventes orgánicos concentrados
PVDF
Baja unión a proteínas, amplia compatibilidad
Muestras biológicas y disolventes habituales de HPLC
Bases fuertes
Esta tabla es una guía general. Antes de un análisis crítico, consulta la ficha del fabricante del lote concreto, porque la resistencia también depende de la carcasa y de la concentración.
Nuestra recomendación según el caso
Tampón acuoso o medio de cultivo: PES o CA de 0,22 µm. Filtran rápido y apenas retienen proteínas.
Extracto en metanol o acetonitrilo para HPLC: nylon o PVDF de 0,45 µm. Si el análisis es sensible, prueba antes con un blanco.
Ácido o base fuertes, o disolvente agresivo: PTFE. Es la única opción segura en estos casos.
Muestra con proteínas que no puedes perder: PES o PVDF antes que nylon.
No recomendamos CA para mezclas con disolventes orgánicos. Es la elección barata que sale cara cuando la membrana se ablanda.
Tamaño de poro: 0,22 µm o 0,45 µm
El tamaño de poro decide qué retiene el filtro. Con 0,45 µm se eliminan partículas y se aclara la muestra, pero no se garantiza la esterilidad. Con 0,22 µm se retienen bacterias y se logra una filtración estéril, siempre que el filtro se suministre como estéril.
En cromatografía, 0,45 µm basta para HPLC convencional. Para UHPLC, con columnas de partícula muy pequeña, usa 0,22 µm. Si dudas, 0,22 µm protege mejor la columna, aunque exige más presión al empujar el émbolo.
Diámetro y volumen: 13 mm o 25 mm
El diámetro fija la superficie útil y, con ella, cuánto volumen filtras antes de que se obture. Como orientación, los de 13 mm van bien para volúmenes pequeños, de unos pocos mililitros hasta unos 10 ml, y para llenar viales. Los de 25 mm se reservan para volúmenes mayores o muestras algo cargadas.
Si la muestra es muy turbia, no fuerces el émbolo. Centrifuga antes o usa un prefiltro. Empujar con violencia rompe la membrana y deja pasar justo lo que querías retener.
Filtros de jeringa para HPLC: pasos para no equivocarte
La filtración previa protege la columna y el inyector, que son lo más caro del equipo. Nuestro método:
Anota el disolvente exacto de la muestra, con su porcentaje de orgánico y su pH.
Elige la membrana en la tabla y confirma en la ficha del fabricante.
Filtra primero un blanco de disolvente y analízalo. Así detectas compuestos que suelta el filtro.
Descarta las primeras gotas de cada muestra para saturar posibles sitios de unión.
Usa un filtro nuevo por muestra.
Errores frecuentes al filtrar
Usar PTFE hidrófobo con agua sin humectarlo: el líquido no pasa y se sube la presión.
Filtrar disolventes orgánicos con CA.
Reutilizar el filtro para ahorrar. Contamina la siguiente muestra y la membrana ya está dañada.
Confundir clarificar con esterilizar: 0,45 µm no sustituye a la filtración estéril.
Saltarse el blanco cuando el análisis busca trazas.
Filtros de jeringa en Material Blanco de Laboratorio
¿Qué diferencia hay entre un filtro de 0,22 µm y uno de 0,45 µm?
El de 0,22 µm retiene bacterias y permite una filtración estéril. El de 0,45 µm elimina partículas y clarifica la muestra, pero no garantiza la esterilidad.
¿Qué filtro de jeringa sirve para HPLC?
Depende del disolvente. Nylon y PVDF de 0,45 µm cubren la mayoría de los casos con fase orgánica. Para UHPLC, usa 0,22 µm.
¿Se puede reutilizar un filtro de jeringa?
No. Son de un solo uso: la membrana se daña y arrastra restos de la muestra anterior.
¿Cuándo uso PTFE en lugar de nylon?
Cuando la muestra lleva ácidos, bases o disolventes agresivos. El nylon se degrada con ácidos fuertes; el PTFE resiste casi todo.
¿Los filtros de jeringa son estériles?
Depende del producto. Comprueba en la ficha si se suministra estéril antes de usarlo en cultivo celular o en filtración estéril.
